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定制组织芯片的点直径和重复点位对免疫组化定量影响大吗?

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提问:大师老手 2026-08-20 浏览 287 4 个回答
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全部回答4
E
Emma 2026-07-04
做免疫组化定量和H-score,我一般建议1.5mm优先。1.0mm虽然通量高、一块片上点数多,但组织面积小,边缘效应和局部异质性对定量影响更明显,容易导致H-score波动。1.5mm单点可观察的细胞数更多,尤其对肺癌、胃癌这类异质性较强的肿瘤,计数更稳健。如果一定要提高通量,可以考虑1.0mm但增加重复点和病例数,不过对定量来说,1.5mm是更安全的选择。
L
Leo 2026-09-17
边缘效应不一定是点直径造成的,更多和切片、烤片、抗原修复、抗体覆盖有关。厂家如果规范用同一石蜡、统一切片厚度、避免边缘点参与定量、使用湿盒和足量抗体,会明显降低。批次间一致性要让供应商固定病理技术人员、同型号切片机、同批次试剂,并对每批芯片做同一参照样本染色。你可以在每张芯片放几个阳性/阴性对照点,用来校正批间漂移。合同里约定批间H-score变异系数控制范围。
A
AssayLine822 2026-09-15
可以让厂家提供数字扫描,但要问清扫描分辨率、格式和是否按整片或按点导出。H-score分析最好在同一次扫描参数下完成,不同批次扫描亮度差异会影响定量。要求提供原始明场图像和H-score计算参数或脚本,方便你们自己复核。若多个批次芯片要比较,尽量不要混用不同扫描仪。分析服务可以作为质控的一项,但最终统计最好还是由你们或病理医生复核关键靶标。
O
OscarBio9352 2026-09-16
重复点位建议至少2个,最好2~3个,并且两个重复点不要总是并排放在芯片同一区域,应尽量分布在不同行或不同区域,减少局部修复、抗体孵育不均造成的系统偏差。如果肿瘤异质性高或样本量允许,可以每例3个点,优先取肿瘤中心和边缘之间的区域。重复点不是简单复制,最好来自不同蜡块或同一蜡块不同深度的区域,这样更能代表肿瘤整体。
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