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流式检测人PBMC中CTLA-4和LAG-3,抗体配色和用量怎么优化?

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提问:Mark 2026-05-13 浏览 183 4 个回答
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邓
邓博4574 2026-09-02
每百万细胞加多少微升不能按固定值照搬,不同批次浓度不同。买回来先做滴定:1×10^6 PBMC,分别加 0.25、0.5、1、2、4 μL,染完看染色指数和阴性群背景,选染色指数高且背景不升的浓度。一般商品化抗体每 1×10^6 细胞 0.25-1 μg 有效,但有些分装浓度低可能到 3-5 μL。预算按管控可先用推荐量中间值,批量前用 5-10 份样本预跑。
曾
曾洋5124 2026-09-10
补偿必须做单阳管,建议用补偿微球或同一细胞染单色,每个抗体单独一管,不要只靠软件自动补偿。30 管预算每管 80 元内,可考虑 BioLegend 小包装、达科为、四正柏等国产分装,或 BD 小规格,但需确认克隆和荧光的现货。货期国内代理通常 3-7 天,提前说清克隆号、荧光和规格,要求同批次。避免不同批次混批,补偿会漂。
许
许娟超 2026-07-08
配色建议:CD3-FITC、CD8-PerCP-Cy5.5、CTLA-4-PE、LAG-3-APC,多数四色机器能跑,补偿可控。CTLA-4 是弱表达,配亮荧光的 PE 合适;LAG-3 用 APC 灵敏。克隆我用过 CD3 SK7、CD8 RPA-T8、CTLA-4 BNI3、LAG-3 11C3C65 或 3DS223H,没明显克隆冲突。CTLA-4 在静息 PBMC 表面极低,必须固定破膜染总蛋白,否则可能假阴性。
袁
袁杰 2026-09-10
流程上一定先做 Fc 阻断,用 human TruStain FcX 或 10% FBS 4℃ 孵 10 分钟,这对单核和树突状细胞非特异性结合 LAG-3 很有用。然后表面染 CD3、CD8、LAG-3,洗后用 Foxp3 或 Transcription Factor 固定破膜液,染 CTLA-4。要做 FMO 荧光减一用来划门,尤其 LAG-3 阳性弱。每百万细胞体系控制 100 μL,2-8℃ 避光 30 分钟,洗涤两次。固定后再染 CTLA-4 不会影响表面标记。
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