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新购入抗人CD19-PE流式抗体后滴定实验怎么做?

医疗器械
提问:刘小小 2026-09-17 浏览 220 5 个回答
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D
DavidCell6299 2026-08-29
1%多聚甲醛固定后次日上机可行,PE是常规小分子荧光素,对固定较耐受,通常分群变化不大。但固定会改变FSC/SSC,可能使细胞轻微缩小、碎片略增。建议染色洗涤后一部分新鲜上机作为基线,另一部分固定后4℃避光,次日再测,比较CD19+阳性比例和MFI。如果PE荧光没有明显下降、CD19+群仍清晰,就可以固定;若下降明显,则尽量当天上机或改用固定时间更短。
S
ScienceBase 2026-08-31
抗人CD19-PE滴定的起始浓度建议从10 μg/mL开始,商品化PE抗体常见0.2-1 mg/mL原液,先稀释到合适工作液。可以设8个浓度:10、5、2.5、1.25、0.625、0.312、0.156、0.078 μg/mL,用100 μL体系染5×10^5 PBMC。CD19在B细胞上表达较强,通常0.1-0.5 μg/mL就能饱和,但需实测。另设0 μg/mL作为背景管。
吴
吴伟刚6095 2026-09-01
每管5×10^5 PBMC完全够做滴定,但如果设8个浓度+复孔,总细胞需求约8-16×10^6 PBMC。临床样本少时可以先做单孔,重点在操作稳定;若样本够,在预计最优浓度附近设2个复孔确认重复性。复孔不是滴定必需,更多是验证操作误差。注意每管细胞数尽量一致,最好来源于同一份PBMC混匀后分装,避免供者间差异干扰浓度效应。
曹
曹磊 2026-09-22
用含0.5% BSA的PBS做稀释液,现配现用,避免把抗体稀释后长时间存放。推荐96孔U底板,每孔50-100 μL体系,细胞5×10^5足够。加抗体后4℃避光孵育30 min,用200 μL washing buffer洗两次。稀释时要精确,尤其低浓度点,建议先配2×浓度再与细胞悬液等体积混合,减少移液误差。滴定实验每个浓度至少1管,中间浓度可做duplicate。
E
Extracting 2026-09-09
滴定结果不要只看阳性百分比,建议计算信噪比:CD19+ B细胞MFI除以CD19- T细胞MFI,或者用染色指数(阳性MFI-阴性MFI)/(2×阴性SD)。绘制浓度-信噪比曲线,选取进入平台期且背景开始升高前的最低浓度,通常就是最佳工作浓度。记录该浓度和抗体lot,后续批量实验按此稀释。注意区分B细胞和浆母/浆细胞CD19弱表达,设门时淋巴细胞群体一致。
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