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When extracting mouse liver protein, how much DTT should be added? The sample amount is about 100 mg.

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Asked by:质控小哥 2026-05-29 Views 151 4 answers
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All Answers4
J
Jack 2026-07-08
担心影响抗体识别的话,常规变性 WB 的 2×/5× 上样缓冲液本身也含 DTT 或 β-巯基乙醇,所以裂解阶段 1–5 mM 的还原环境对多数线性表位影响不大。但如果你要做 IP、Co-IP 或非还原电泳,DTT 会破坏构象表位/蛋白互作,这时要么裂解液不加 DTT,要么设置 0、1、2、5 mM 梯度,用同一抗体比较信号和背景。别直接上高浓度,10 mM 以上容易出现泳道弥散或条带变弱。
K
KevinGene 2026-09-04
100 mg 组织通常加 1 mL 左右裂解液,常用 DTT 终浓度 1–5 mM。你手头是 1 M 母液,按 1 mL 裂解液算加 1–5 μL 即可,别直接按组织量加。肝脏含较多氧化酶和血红蛋白,建议裂解液先加蛋白酶/磷酸酶抑制剂,DTT 现用现加,匀浆后冰上裂解 20–30 min,再离心取上清。若发现上清黏稠或沉淀多,可先超声或过 25G 针头,不会靠多加 DTT 解决。
董
董晨 2026-09-16
保存方面,1 M DTT 母液最怕反复冻融和长期放 4°C。到货后建议按 100–200 μL/管分装在 PCR 管或螺口管里,-20°C 避光保存;取一支当天用完,不要回冻。配好的含 DTT 裂解液我会尽量当天用,最多 4°C 过夜,第二天补加一点新鲜 DTT 再用。如果打开母液闻到明显硫醇味变淡或颜色变深,提示可能氧化,建议换新。
小
小妹小哥 2026-09-22
从实操角度,肝脏样本容易氧化,除 DTT 外我习惯在取材时用预冷 PBS 灌洗一下,去掉血细胞,再冻存或直接匀浆。若做磷酸化检测,裂解液里还可加磷酸酶抑制剂。DTT 终浓度建议先用 2 mM 起步,如果条带背景高、泳道拖尾或蛋白聚集,再在 1–5 mM 间调整。不要一次加到 10 mM,否则可能影响后续 BCA 定量和电泳条带形态。
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