不能这样操作的，DNA,RNA会有干扰。一般我们只用于纯品的偶联；如果是在NHS磁珠上先固定这蛋白对应的抗体，然后通过抗体结合蛋白， 可以去除多余的核酸。
不可以，这个是模拟纯化条件的平衡和洗脱
稀盐酸是清洗去除磁珠保护液。PEG和氯化钠理论不影响NHS偶联。
是配0.1M的乙酸钠和0.5M的氯化钠，再用乙酸调PH定容。
保存液中不能有tris体系，高浓度甘油，叠氮化钠等组分。
～0.11-0.16mmol Cl-/ml 基质。
（1）样品的PH和盐浓度（与结合溶液一致），盐的含量一定要降低到电导5ms/cm以下（约为50 mM NaCl)；（2）PH选择的是否合适；（3）如果使用弱的离子交换，要充分平衡，一般要达到10CV以。
未使用的产品保护液是异丙醇，可以在-20℃中保存不结冰，偶联蛋白后为考虑蛋白稳定性且反复冻融影响填料性能，选择2-8℃保存。
（1）在不改变buffer条件下，在洗脱的步骤改为线性梯度洗脱，如果已经是线性洗脱，那么延缓梯度增加的速度，如原来10个CV拉到100%，现在改为20个CV拉到100%，梯度拉的越缓慢分辨率越高，但是相应的样品稀释度也会增加；（2）优化buffer条件，包括PH及盐的浓度和种类；（3）使用更高分辨率…
（1）样品的PH和盐浓度（与结合溶液一致），盐的含量一定要降低到电导5ms/cm以下（约为50 mM NaCl)；（2）PH选择的是否合适；（3）如果使用弱的离子交换，要充分平衡，一般要达到10CV以。
未使用的产品保护液是异丙醇，可以在-20℃中保存不结冰，偶联蛋白后为考虑蛋白稳定性且反复冻融影响填料性能，选择2-8℃保存。
（1）在不改变buffer条件下，在洗脱的步骤改为线性梯度洗脱，如果已经是线性洗脱，那么延缓梯度增加的速度，如原来10个CV拉到100%，现在改为20个CV拉到100%，梯度拉的越缓慢分辨率越高，但是相应的样品稀释度也会增加；（2）优化buffer条件，包括PH及盐的浓度和种类；（3）使用更高分辨率…
（1）样品的PH和盐浓度（与结合溶液一致），盐的含量一定要降低到电导5ms/cm以下（约为50 mM NaCl)；（2）PH选择的是否合适；（3）如果使用弱的离子交换，要充分平衡，一般要达到10CV以。
未使用的产品保护液是异丙醇，可以在-20℃中保存不结冰，偶联蛋白后为考虑蛋白稳定性且反复冻融影响填料性能，选择2-8℃保存。
（1）在不改变buffer条件下，在洗脱的步骤改为线性梯度洗脱，如果已经是线性洗脱，那么延缓梯度增加的速度，如原来10个CV拉到100%，现在改为20个CV拉到100%，梯度拉的越缓慢分辨率越高，但是相应的样品稀释度也会增加；（2）优化buffer条件，包括PH及盐的浓度和种类；（3）使用更高分辨率…
1)延长粗蛋白与磁珠的孵育时间；2)适当降低样品溶液和Binding/Wash Buffer中的Imidazole浓度；3)添加合适的蛋白酶抑制剂，防止目标蛋白降解；4)增加磁珠用量；5)延长洗脱目标蛋白的时间或增加洗脱次数；6)在样品溶液和其它缓冲液中添加表面活性剂等物质。
1)适当提高样品溶液和Binding/Wash Buffer中的Imidazole和NaCl浓度；2)在纯化过程中添加合适的蛋白酶抑制剂，防止目标蛋白降解；3)在样品溶液和缓冲液中加入表面活性剂等物质；4)延长清洗的时间，增加清洗次数；5)采用梯度Imidazole浓度洗脱目标蛋白。
有，见下图
1)延长粗蛋白与磁珠的孵育时间；2)适当降低样品溶液和Binding/Wash Buffer中的还原型谷胱甘肽浓度；3)添加合适的蛋白酶抑制剂，防止目标蛋白降解；4)增加磁珠用量；5)延长洗脱目标蛋白的时间或增加洗脱次数；6)在样品溶液和其它缓冲液中添加表面活性剂等物质。
1)适当提高样品溶液和Binding/Wash Buffer中的还原型谷胱甘肽浓度；2)在纯化过程中添加合适的蛋白酶抑制剂，防止目标蛋白降解；3)在样品溶液和缓冲液中加入表面活性剂等物质；4)延长清洗的时间，增加清洗次数。